内膜系统、蛋白质分选与囊泡运输¶
真核细胞的分泌蛋白、质膜蛋白和许多细胞器蛋白都在胞质核糖体上起始合成,却必须被送到正确区室,并在途中保持朝向、接受修饰和通过质量检查。内质网、高尔基体(Golgi apparatus)、内体、溶酶体、分泌囊泡与质膜由膜泡或小管往返联通,构成内膜系统的主要物流网络。核膜外膜与内质网连续;不同教材是否把质膜和核膜列入“内膜系统”可有术语差别,不影响它们在发生和运输上的实际联系。1
这套系统由多个保持独特组成的区室和双向运输路线构成。每个区室维持特定的脂质、腔内 pH、酶和膜上小 GTP 酶(small GTPase),货物在顺向运输、回收和降解之间不断分流。运输载体从供体膜出芽时,货物连同膜一起进入载体;其腔内一侧在融合后仍朝向受体区室的腔,最终到达质膜时则朝向细胞外。正是这种拓扑守恒,使在内质网或高尔基体腔内添加的糖链最终出现在细胞表面。2
区室拓扑与双向物流¶
内膜系统的共同性来自可交换的膜与货物,各区室的腔面仍保持分隔。内质网与外核膜有直接膜连续性;内质网—高尔基体、反式高尔基网络(trans-Golgi network,TGN)—内体、内体—溶酶体以及分泌囊泡—质膜之间主要借膜泡和小管交换。顺向流把新合成成分送往远端,逆向流则回收受体、运输机器和误带出的驻留蛋白,从而避免供体区室被持续耗空。3
| 区室 | 主要输入 | 主要加工或分选 | 代表性输出 |
|---|---|---|---|
| 内质网 | 正在合成的分泌蛋白与膜蛋白;新合成膜脂 | 跨膜转位、膜拓扑建立、N-糖基化、二硫键与折叠质量控制 | COPII 载体至 ERGIC/高尔基体;驻留蛋白回收 |
| 顺面至反面高尔基体 | 来自内质网的蛋白质和脂质 | N-聚糖修整、O-糖基化、蛋白聚糖和糖脂合成、蛋白水解加工 | TGN 分往质膜、分泌颗粒或内体 |
| 早期与回收内体 | 内吞货物及来自 TGN 的部分载体 | 受体—配体解离、膜与腔内容物分离、回收和转胞吞 | 质膜、TGN 或晚期内体 |
| 晚期内体/多泡体 | 未回收的内吞货物、自噬与吞噬通路输入 | 腔内小泡形成、持续酸化、获得溶酶体组分 | 内溶酶体及成熟溶酶体 |
| 溶酶体 | 内吞、吞噬、自噬和生物合成通路 | 酸性水解、单体输出、营养感知与膜修复 | 小分子回到胞质;部分细胞发生溶酶体胞吐 |
膜蛋白朝向一旦在内质网建立,后续出芽和融合通常不把膜翻面。内质网腔、高尔基体腔、内体与溶酶体腔因而都属于非胞质侧;质膜外侧是这套拓扑的最终延伸。胞质侧结构域始终面对胞质,能够被包被蛋白、Rab、适配蛋白和激酶识别;腔内结构域则接受糖基化、二硫键形成或酸性水解。
蛋白质进入内质网¶
信号识别与 Sec61 转位¶
所有核编码蛋白都在胞质中的核糖体上起始翻译,同一核糖体可在游离和内质网结合状态之间转换。当新生链露出可被识别的疏水信号序列时,信号识别颗粒(signal recognition particle,SRP)结合新生链与核糖体,使延伸暂时减慢,并把复合物交给内质网膜上的 SRP 受体和 Sec61 转位通道。SRP 与受体的 GTPase 循环完成交接后,翻译继续,延伸中的多肽同时穿入内质网腔或侧向释放到膜内。4
可切除的 N 端信号肽常引导可溶性分泌蛋白进入内质网腔,信号肽酶随后在腔侧切除它。内部信号锚定序列既可充当靶向信号,也可成为跨膜螺旋;停止转移序列会终止该段多肽继续穿膜。多个起始转移和停止转移序列按顺序组合,建立多跨膜蛋白的拓扑。带正电残基的分布、疏水段性质和转位装置共同决定各段朝向。
共翻译转位是哺乳动物分泌通路的主线,另有翻译后转位和尾锚定蛋白插入等入口。一些较短的分泌蛋白可在翻译后由伴侣维持可转位状态再进入内质网;尾锚定蛋白在翻译结束后由专门装置把 C 端跨膜段插入膜。蛋白质一旦被送入内质网,后续去向仍由折叠状态、驻留/回收信号和出口信号共同决定。
膜拓扑与代谢接口¶
内质网也是多数膜脂合成和多条代谢反应的界面。膜脂先在特定叶片生成,再由脂质扰乱酶(scramblase)、脂质转移蛋白、膜接触位点或膜泡运输分配到其他膜。膜接触位点让两种细胞器靠近并保持腔面分隔,尤其适合交换不溶于水的脂质和局部 Ca\(^{2+}\) 信号。磷脂、鞘脂和胆固醇的具体合成路线见脂质合成代谢。
区室化也能改变代谢物的可达性。肝和肾中葡萄糖-6-磷酸酶复合体的催化位点朝向内质网腔,G6P 需由 SLC37A4 输入后才能水解,产物再离开内质网;这个跨膜接力是糖原分解和糖异生共享的末端步骤,见G6P 水解与游离葡萄糖输出。它说明“反应位于内质网”既可能指膜的胞质面,也可能指膜内或腔面,必须按拓扑逐一判断。
折叠、修饰与内质网质量控制¶
腔内折叠与糖蛋白检查¶
内质网腔为二硫键形成提供适宜的氧化环境。蛋白二硫键异构酶(protein disulfide isomerase,PDI)催化二硫键形成与重排,免疫球蛋白重链结合蛋白/葡萄糖调节蛋白 78(binding immunoglobulin protein/glucose-regulated protein 78,BiP/GRP78)是 Hsp70 家族分子伴侣,能结合暴露的疏水片段并协助转位、折叠和复合体装配。BiP 持续参与新生蛋白成熟,也是内质网蛋白稳态与应激感知网络的重要节点。5
多数进入分泌通路的蛋白在内质网接受 N-连接糖基化。预先组装在多萜醇载体上的 Glc\(_3\)Man\(_9\)GlcNAc\(_2\) 寡糖被整体转移到 Asn-X-Ser/Thr 序列中的 Asn,X 通常不能是 Pro;有合适序列仍不保证位点一定被占据。随后葡萄糖残基的切除与再添加把糖链状态接入 calnexin/calreticulin 折叠循环,PDI 家族、糖苷酶和甘露糖苷酶共同提供构象检查。正确折叠和装配的蛋白更易离开内质网,持续错误折叠的底物则被保留并导向降解。
ERAD 与泛素—蛋白酶体¶
内质网相关降解(endoplasmic-reticulum-associated degradation,ERAD)先识别腔内、膜内或胞质侧的异常结构,再由包含 E3 泛素连接酶和通道/膜重塑因子的复合物把底物逆向移出或抽提到胞质。p97/VCP 等 AAA\(^+\) ATPase 提供抽提动力,底物被多聚泛素化后交给 26S 蛋白酶体。ERAD 由多种抽提和膜重塑装置把膜区室内的质量检查与胞质蛋白水解连接起来。6
胞质和细胞核中的许多短寿命调节蛋白也使用泛素—蛋白酶体系统。E1 激活、E2 转运、E3 选择底物,泛素链的连接方式与长度共同影响后果;K48 链常导向蛋白酶体,泛素也能参与内体分选、自噬和信号。完整的酶学过程见泛素—蛋白酶体依赖的蛋白质降解。磷酸化、乙酰化、甲基化、脂化和糖基化等翻译后修饰可以改变活性、定位或相互作用,其中只有特定组合会构成降解标签。
未折叠蛋白反应¶
当进入内质网的蛋白负荷、折叠能力和清除能力失配时,细胞启动未折叠蛋白反应(unfolded protein response,UPR)。哺乳动物三条经典感受支路是 IRE1、PERK 和 ATF6:IRE1 的核酸内切酶活性促成 XBP1 mRNA 非常规剪接;PERK 磷酸化 eIF2\(\alpha\),降低多数蛋白的翻译起始,同时允许 ATF4 等应激程序表达;ATF6 离开内质网到达高尔基体,经受控膜内蛋白水解释放转录因子结构域。三条支路共同调整蛋白输入、伴侣和 ERAD 容量、膜脂代谢及区室大小。7
BiP 与这些感受器的结合和重新分配是重要调节层,感受器寡聚化、直接结合异常蛋白以及膜脂双层压力也可能参与 UPR 启动。UPR 首先是恢复稳态的适应反应;负荷长期持续时,翻译抑制、氧化还原改变、炎症与细胞死亡信号可能逐渐占优势。细胞层面的负荷控制与整体应激反应的界面见细胞应激的负荷控制与修复。
内质网出口与高尔基体成熟¶
COPII 出口与 COPI 回收¶
正确折叠的货物在内质网出口位点进入包被蛋白复合体 II(coat protein complex II,COPII)载体。Sar1 结合 GTP 后插入膜并募集 Sec23/Sec24 内层包被;Sec24 及货物受体读取许多跨膜货物的胞质侧出口信号,Sec13/Sec31 外层包被促进膜弯曲。可溶性货物可借跨膜货物受体浓缩,也可随腔内容积进入,因此 COPII 同时包含选择性捕获与体相流。大型货物还可通过改变出口位点和包被几何进入尺寸更大的载体。8
COPII 载体脱被后形成囊泡—小管簇和内质网—高尔基体中间区(ER–Golgi intermediate compartment,ERGIC),再向顺面高尔基体移动。误带出的 BiP、PDI 等腔内驻留蛋白由 KDEL 受体识别,许多内质网膜蛋白的胞质尾带有双赖氨酸回收信号;包被蛋白复合体 I(coat protein complex I,COPI)载体把这些成分以及运输机器从 ERGIC/高尔基体送回内质网。COPI 还参与高尔基体内逆向运输,COPII 和 COPI 都包含选择性分选,实际方向由出芽位置和货物决定。
高尔基体极性与膜囊成熟¶
高尔基体从顺面高尔基网络、顺面和中间膜囊延伸到反面膜囊与 TGN,酶、脂质组成和腔内环境沿此轴形成梯度。来自内质网的 N-聚糖在不同膜囊依次修剪和延伸;黏蛋白型 O-糖基化、糖胺聚糖链延伸、酪氨酸硫酸化以及许多糖脂的合成也分布在高尔基体不同区域。糖链结果取决于底物可达性、核苷酸糖转运体、酶的空间分布和通过时间,由多条可分支的加工路线形成。9
ABO 抗原展示了末端糖修饰如何改变细胞表面身份:H 前体在高尔基体中接受 A 或 B 糖基转移酶的末端修饰,O 型常保留未加 A/B 决定簇的 H 结构。血型表型由糖基转移酶、前体供应和承载这些糖链的多种糖蛋白或糖脂共同形成;完整遗传与输血意义见H 前体的 ABO 末端糖修饰。
膜囊成熟模型认为,新形成的顺面膜囊连同大件货物逐渐成为中间和反面膜囊,而高尔基体驻留酶主要通过 COPI 载体和小管逆向回收。某些小货物也可借膜泡或膜内分区较快前行,不同生物和货物支持的模型权重不同。高尔基体的极性来自膜囊生成、成熟、逆向回收和局部保留的动态平衡。10
TGN 分选与分泌¶
TGN 是合成物流的重要分岔口。多数细胞持续把膜脂、质膜蛋白和可溶性货物送到细胞表面,这构成组成型分泌;极性上皮还需识别胞质尾信号、糖链、脂质环境或适配因子,分别送往顶端和基底外侧膜。部分货物从 TGN 进入内体,另一些高尔基体驻留蛋白则被保留或回收。
内分泌、外分泌和神经细胞可把特定货物浓缩在分泌颗粒中。颗粒在成熟时发生腔内酸化、前体蛋白水解和膜成分回收,待 Ca\(^{2+}\) 或其他受调信号触发后才与质膜融合。组成型分泌同样受运输能力和细胞状态调节;其特征是货物持续离开 TGN,而非长期储存在受调颗粒中。
可溶性溶酶体酸性水解酶先在内质网获得 N-聚糖,随后在高尔基体由 N-乙酰葡糖胺-1-磷酸转移酶识别蛋白表面的构象信号,再经“揭盖”反应形成甘露糖-6-磷酸(mannose-6-phosphate,M6P)。TGN 中的 M6P 受体结合这些酶,并通过适配蛋白和 clathrin 载体送往内体;酸化使酶与受体分离,受体再返回 TGN 或质膜。溶酶体膜蛋白和部分水解酶还使用 M6P 非依赖信号,构成补充分选路线。11
内体网络中的回收与降解分流¶
早期内体与回收路线¶
由质膜进入的内吞囊泡脱去包被后与早期内体融合。早期内体常由含较大腔体的区段和细长小管组成;Rab5、PI3P 及其效应蛋白 EEA1 等共同定义膜身份和融合能力。V 型 H\(^+\)-ATPase 使腔内逐渐酸化,许多受体—配体因此解离。膜蛋白容易进入表面积大、腔体积小的回收小管,留在腔内的可溶性配体则更倾向沿降解方向前进。12
回收可以从早期内体较快返回质膜,也可经 Rab11 等参与的回收内体缓慢返回或暂时储存。LDL 与 LDL 受体在酸性内体中解离,受体返回质膜,LDL 留在降解路线;含 GLUT4 的专门回收区室则可在胰岛素信号下向质膜动员。极性上皮还可把货物从一侧内吞、经内体分选后从另一侧外排,形成转胞吞。内吞入口的包被、吞噬和大胞饮见内吞形成的大宗运输入口。
多泡体与晚期内体成熟¶
准备降解的膜蛋白常被泛素化,运输所需的内体分选复合体(endosomal sorting complexes required for transport,ESCRT)把它们分选到向腔内出芽的小泡中,形成多泡体。这样一来,受体的胞质结构域被封入腔内,既终止许多信号,也让整个膜蛋白随后接触溶酶体水解酶。表皮生长因子(epidermal growth factor,EGF)受体等可沿此路线下调;其他受体的回收或降解取决于修饰、适配蛋白、配体状态和细胞背景。
早期内体向晚期内体的转变伴随 Rab5 向 Rab7 的膜身份转换、进一步酸化、回收小管脱落、向细胞内部移动以及与 TGN 和自噬通路交换。晚期内体与溶酶体可以直接融合形成内溶酶体,活跃降解后再通过膜重塑恢复为富含水解酶的溶酶体。早期内体、晚期内体、内溶酶体和溶酶体是连续成熟与再生循环中的功能状态;“初级/次级溶酶体”则描述其中某些形态。
溶酶体降解、回收与信号¶
酸性腔室与底物输出¶
溶酶体依靠 V 型 H\(^+\)-ATPase 建立约 pH 4.5—5 的酸性腔,离子通道和转运体协助电荷补偿与渗透平衡。蛋白酶、核酸酶、脂肪酶、糖苷酶、磷酸酶和硫酸酯酶等在此条件下协同水解大分子,所得氨基酸、单糖、核苷、脂肪酸和无机离子再由膜转运体输出。溶酶体相关膜蛋白(lysosome-associated membrane protein,LAMP)等高度糖基化膜蛋白与糖萼、脂质组成、膜修复和质量控制共同维持腔面稳定。13
糖鞘脂的降解尤其体现分步协作:酸性水解酶依次移除末端基团,皂苷蛋白(saposin)等活化蛋白帮助酶接近膜中的疏水底物,分解产物还需跨溶酶体膜输出。水解酶、辅助蛋白或转运体任一环节的缺陷都可能造成特定脂质积累。疾病的共同细胞后果见细胞器降解障碍与物质积累,糖原的专门水解路线见溶酶体糖原周转。
自噬与细胞器更新¶
宏自噬以成核、延伸的隔离膜包围胞质、蛋白聚集体或细胞器,闭合后形成双层膜自噬体;自噬体外膜与晚期内体或溶酶体融合,内膜和货物在腔内降解。ATG8/LC3 家族脂化帮助隔离膜生长和货物受体结合。营养不足时可增强较广泛的物质回收,泛素及专门受体也可把受损线粒体、过氧化物酶体、内质网片段或病原体选择性送入自噬。微自噬由内体/溶酶体膜直接摄取货物,伴侣介导自噬则识别特定可溶蛋白并逐个跨溶酶体膜转运。14
溶酶体也是营养感知和生长信号平台。氨基酸、能量和生长因子状态通过 Rag GTPase、Ragulator 等装置调节雷帕霉素机制靶复合体 1(mechanistic target of rapamycin complex 1,mTORC1)在溶酶体表面的募集与活性;营养充足时 mTORC1 促进合成并抑制部分自噬程序,营养不足时 TFEB/TFE3 等转录因子可加强溶酶体发生和自噬基因表达。该反馈同时整合胞质营养、ATP、应激和细胞类型。
蛋白酶体与自噬—溶酶体按底物尺度和状态分工:前者适合可被展开后穿入狭窄催化腔的单个蛋白,后者能处理大复合物、聚集体和完整细胞器。两者共享泛素信号并互相补偿,其降解产物都返回合成与能量代谢。完整蛋白质周转账本见蛋白质周转。
载体出芽、识别与膜融合¶
包被与货物选择¶
包被装置同时组织货物、弯曲膜并限定出芽区域。小 GTPase 把包被募集到特定膜,适配蛋白或包被亚基读取货物胞质尾信号,膜脂和曲率蛋白进一步稳定芽体。多数载体在到达靶膜前脱被,使 Rab、系链因子和可溶性 N-乙基马来酰亚胺敏感因子附着蛋白受体(soluble NSF attachment protein receptor,SNARE)可以接近。载体也可呈小管或不规则形态,膜颈切割既可能由 dynamin 完成,也可能使用其他机械和脂质重塑方式。15
| 包被 | 主要出芽位置与方向 | 货物选择要点 |
|---|---|---|
| COPII | 内质网出口位点至 ERGIC/高尔基体 | Sar1 启动装配;Sec24 和货物受体识别多类出口信号,也允许一定体相流 |
| COPI | 高尔基体内及 ERGIC/高尔基体返回内质网 | ARF 家族调节装配;回收 KDEL 受体、带双赖氨酸信号的膜蛋白和 Golgi 驻留机器 |
| clathrin+适配蛋白 | 质膜至内体;TGN 与内体之间 | clathrin 提供外层格架,AP、GGA 等适配因子把货物信号、磷酸肌醇和包被连接起来 |
这三类包被采用相关的膜变形原则,同一种包被可参与多个方向或区室的运输。细胞还使用 retromer、retriever、ESCPE-1 等管状分选装置把货物从内体回收至质膜或 TGN;分泌、内吞和细胞器更新也包含许多不依赖经典三类包被的载体。
Rab、系链因子与 SNARE¶
Rab 小 GTPase 的活性循环给膜提供时空身份。GEF 促进 Rab 结合 GTP 并招募运动、系链和脂质调节效应蛋白,GAP 促进水解,GDI 可在胞质中携带部分 GDP 状态 Rab。长杆状系链蛋白或多亚基系链复合体先在较远距离捕获载体,随后 SNARE 复合体把两层膜拉近并克服水化排斥,促进脂质混合和融合孔形成。
传统的 v-SNARE/t-SNARE 命名强调载体与靶膜位置,更一般的结构分类则把组成融合复合体的 SNARE 分为一条 R-SNARE 和三条 Q-SNARE。SNARE 配对提供重要选择性,但靶向准确性还依赖 Rab、系链因子、磷酸肌醇、SM 蛋白、空间位置和调控信号。融合后,\(\alpha\)-SNAP 招募 NSF,NSF 水解 ATP 拆解顺式 SNARE 复合体以供再用;ATP 主要用于复合体重置,驱动两膜融合的直接能量来自 trans-SNARE 拉链式装配及其与膜脂的耦联。
载体的长距离移动常借微管或肌动蛋白马达,皮层骨架也能限制、捕获或开放分泌位点。这里的包被和融合装置回答“装什么、认哪层膜、怎样融合”,轨道极性、马达步进和细胞形态如何组织运输见微管马达与细胞内物流。
内膜系统以外的蛋白质分选¶
细胞核、线粒体、叶绿体和过氧化物酶体主要通过门控或跨膜转位获得蛋白。核定位信号由输入蛋白(importin)识别,折叠蛋白可通过核孔复合体的选择性屏障,Ran-GTP 梯度赋予运输方向。线粒体与叶绿体前体多数由胞质伴侣维持适合输入的状态,经 TOM/TIM 或 TOC/TIC 等转位装置跨膜;过氧化物酶体的 PEX5/PEX7 路线还能输入已经折叠甚至装配的货物。各路线见核编码蛋白的输入与装配、叶绿体蛋白输入与过氧化物酶体蛋白输入。
过氧化物酶体的膜发生与内质网存在接口,一些膜蛋白或前体膜可由内质网贡献;成熟过氧化物酶体的基质蛋白输入主要使用 PTS—PEX 装置。线粒体、叶绿体和过氧化物酶体所需脂质还可在膜接触位点由脂质转移蛋白直接交换。细胞内物流由门控运输、跨膜转位、膜泡运输和非膜泡脂质转移共同构成。
从静态形态到动态机制的证据¶
电子显微镜显示糙面内质网、高尔基膜囊、多泡体和分泌颗粒的超微结构,但一张切片无法确定运输方向。脉冲—追踪放射自显影在胰腺腺泡细胞中观察到新生分泌蛋白的标记依次出现在糙面内质网、高尔基体和酶原颗粒,由时间顺序建立了分泌通路。蛋白酶保护实验可判断结构域位于膜的哪一侧;Endo H 抗性可报告某些 N-聚糖已经过 Golgi 加工,PNGase F 可验证 N-聚糖占位,糖链质谱则进一步分辨加工产物。16
酵母温度敏感 sec 突变在不同限制步骤积累内质网、高尔基体或小泡,按遗传阻断次序拆出了运输模块;动物细胞无细胞重构又从生化上纯化出 NSF、SNAP 和 SNARE 等融合机器。GFP 标记、光漂白恢复、同步释放系统和活细胞超分辨成像进一步显示,ER 出口、Golgi 膜囊、内体和溶酶体持续移动与重塑。不同方法分别报告形态、时间、分子必要性或体外充分性,把它们组合起来才能区分“同处一处”“先后到达”和“直接催化”。17
参考资料与延伸阅读¶
- Alberts B, Johnson A, Lewis J, et al. The Endoplasmic Reticulum. In: Molecular Biology of the Cell. 4th ed. Garland Science; 2002.
- Alberts B, Johnson A, Lewis J, et al. Transport from the ER through the Golgi Apparatus. In: Molecular Biology of the Cell. 4th ed. Garland Science; 2002.
- Alberts B, Johnson A, Lewis J, et al. Transport from the Trans Golgi Network to Lysosomes. In: Molecular Biology of the Cell. 4th ed. Garland Science; 2002.
- Alberts B, Johnson A, Lewis J, et al. Transport into the Cell from the Plasma Membrane: Endocytosis. In: Molecular Biology of the Cell. 4th ed. Garland Science; 2002.
- Cooper GM. Protein Sorting and Transport: The Endoplasmic Reticulum, Golgi Apparatus, and Lysosomes. In: The Cell: A Molecular Approach. 2nd ed. Sinauer Associates; 2000.
- Bonifacino JS, Glick BS. The mechanisms of vesicle budding and fusion. Cell. 2004;116:153–166.
- Gomez-Navarro N, Miller E. Protein sorting at the ER–Golgi interface. Journal of Cell Biology. 2016;215:769–778.
- Ellgaard L, Helenius A. Quality control in the endoplasmic reticulum. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 2003;4:181–191.
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- Glick BS, Luini A. Models for Golgi traffic: a critical assessment. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 2011;3:a005215.
- Huotari J, Helenius A. Endosome maturation. The EMBO Journal. 2011;30:3481–3500.
- Mizushima N, Komatsu M. Autophagy: renovation of cells and tissues. Cell. 2011;147:728–741.
- Settembre C, Perera RM. Lysosomes as coordinators of cellular catabolism, metabolic signalling and organ physiology. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 2024;25:223–245.
- Nobel Assembly at Karolinska Institutet. Machinery Regulating Vesicle Traffic: Scientific Background. 2013.
-
内质网、高尔基体、溶酶体与蛋白质分选的教材总框架见 Cooper 的蛋白质分选与运输章节。 ↩
-
双向膜流、货物选择、内体—溶酶体和自噬的组织实质性改编自 osm.bio 《第十三章 内膜系统运输》固定版本,固定版本贡献者为长河,原文按 CC BY-SA 4.0 许可;相关内容经重组,并用 Alberts、Cooper 教材及所列论文交叉核验。 ↩
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SRP、Sec61、可溶蛋白转位与膜蛋白插入的经典框架见 Alberts 等的内质网章节;翻译后转位与质量控制接口见 Fewell 与 Brodsky 的内质网进入综述。 ↩
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BiP、PDI、糖蛋白折叠检查及异常构象保留的证据框架见 Ellgaard 与 Helenius 的内质网质量控制综述。 ↩
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ERAD 的识别、逆向移位/抽提和胞质蛋白酶体降解机制,见 Lemberg 与 Strisovsky 的细胞器蛋白稳态综述。 ↩
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IRE1、PERK、ATF6 三支路及 UPR 从稳态适应转向慢性损伤的边界,见 Walter 与 Ron 的UPR 综述。 ↩
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COPII 选择性捕获、体相流和货物受体的并存,见 Gomez-Navarro 与 Miller 的ER—Golgi 分选综述及 Alberts 等的ER—Golgi 运输章节。 ↩
-
稳定区室、膜囊成熟、管状运输和快速分区等模型的证据与限制,见 Glick 与 Luini 的高尔基体运输模型评述。 ↩
-
M6P 形成、M6P 受体循环及膜蛋白的替代分选路线,见 Alberts 等的TGN 至溶酶体运输章节。 ↩
-
早期内体的回收分流、Rab 转换、多泡体形成和内溶酶体循环,见 Huotari 与 Helenius 的内体成熟综述及 Alberts 等的内吞章节。 ↩
-
COPI、COPII、clathrin 包被及 Rab—SNARE 融合装置的共同机制,见 Bonifacino 与 Glick 的膜泡出芽与融合综述。 ↩
-
脉冲—追踪、细胞分级和电镜如何共同建立 ER—Golgi—分泌颗粒时序,见 The secretory pathway at 50。 ↩
-
酵母 sec 遗传筛选、VSV-G 无细胞重构及 NSF/SNAP/SNARE 发现史,见 Nobel Assembly 的2013 年科学背景。 ↩
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